實(shí)驗原理

測定蛋白質(zhì)的定量方法有很多，目前常用的有凱氏定氮法；比色法主要包括雙縮脲法、Folin-酚試劑法及 染料結合法；紫外分光光度法等
雙縮脲(Biuret)法：在堿性溶液中，雙縮脲(H2N—CO—NH—CO—NH2)與二價(jià)銅離子作用形成紫紅色的絡(luò )合物，這一反應稱(chēng)雙縮脲反應。凡分子中含二個(gè)或二個(gè)以上酰胺基(—CO—NH2)，或與此相似的基團[如—CH2—NH2，—CS—NH2，—C(NH)NH2]的任何化合物，無(wú)論這類(lèi)基團直接相連還是通過(guò)一個(gè)碳或氮原子間接相連，均可發(fā)生上述反應。蛋白質(zhì)分子含有眾多肽鍵(—CO—NH—)，可發(fā)生雙縮脲反應，且呈色強度在一定濃度范圍內與肽鍵數量即與蛋白質(zhì)含量成正比，可用比色法測定蛋白含量。與同樣處理的蛋白標準液比較，經(jīng)計算或查標準曲線(xiàn)即可求出血清總蛋白質(zhì)含量。
實(shí)驗試劑

1．6mol/L氫氧化鈉溶液  
稱(chēng)取氫氧化鈉(NaOH，優(yōu)級純)240g，用新鮮蒸餾水配制成1L，置室溫貯存在密封的聚乙烯瓶里。
2．雙縮脲試劑  
稱(chēng)取未失結晶水的硫酸銅(CuSQ·5H20) 3.0g，溶于500m1新鮮蒸餾水中，加酒石酸鉀鈉(NaKC4H4O6.4H2O)9.0g，碘化鉀(KI)5.0g，待安全
溶解后，加入6mol/L氫氧化鈉溶液100ml，zui后加蒸餾水至1L。室溫貯存在密閉的聚乙烯瓶里，約穩定6個(gè)月。
3．蛋白標準液 
可用商品血清蛋白標準液或定值質(zhì)控血清為標準。亦可收集混合新鮮血清，用凱氏定氮法標定后，加疊氮鈉防腐(疊氮鈉的終濃0.5~1.0g/L)，冰凍
保存。
實(shí)驗設備

恒溫水浴箱、722（721）分光光度計、吸管、試管、坐標紙
實(shí)驗步驟

1.   配制20g／L蛋白標準液  如蛋白標準液濃度為70g／L，則取此液2m1，加入新鮮蒸餾水5ml，混勻即成。
2.   按表操作
 
    加入物（ml）      空白管        1        2        3        4        5     測定管
20g/L蛋白標準液         ～        0.1        0.2       0.3            0.4            0.5            ～   
蒸餾水        0.5         0.4        0.3       0.2        0.1       ～          0.4
待測樣品液體       ～         ～         ～           ～          ～          ～            0.1
雙縮脲試劑         3.0       3.0          3.0            3.0             3.0           3.0            3.0     
相當血液蛋白質(zhì)（g/L）           ～           20        40        60        80       100        
混勻，置37℃水浴10min(或25℃30min)，用540nm波長(cháng)比色，以空白管調零，讀取各管吸光度。
3.   標準曲線(xiàn)繪制
1—5為標準曲線(xiàn)管，測得吸光度后，以吸光度為縱坐標，蛋白質(zhì)濃度為橫坐標繪制標準曲線(xiàn)。
4.   實(shí)驗結果
根據測定管吸光度，從標準曲線(xiàn)查找相對應的總蛋白濃度。 
 
注意事項

1．雙縮脲試劑中，加入酒石酸鉀鈉，Cu2 形成穩定的絡(luò )合銅離子，以防止CuSO4·5H20不穩定形成Cu(OH)2沉淀。酒石酸鉀鈉與CuSO4·5H20之比
      不低于3：1，加入KI作為抗氧化試劑。
2．雙縮脲試劑要封閉貯存．防止吸收空氣中的二氧化碳。
3．本法各種蛋白質(zhì)的顯色程度基本相同，重復性好，幾乎不受溫度影響，*缺點(diǎn)是靈敏度較低。
4．黃疸血清．嚴重溶血對本法有明顯干擾。
5．本法繪制的標準曲線(xiàn)是一條通過(guò)原點(diǎn)的直線(xiàn)，在100g/L濃度之內呈良好的線(xiàn)性關(guān)系。